10×BN轉(zhuǎn)膜緩沖液
產(chǎn)品編號
|
產(chǎn)品名稱
|
規(guī)格
|
BC600P
|
10×BN轉(zhuǎn)膜緩沖液(粉末)
|
1升
|
● 簡介:
10×BN轉(zhuǎn)膜緩沖液(10×Blue Native Transfer Buffer)適用于BN蛋白電泳后凝膠上非變性蛋白的轉(zhuǎn)膜。本轉(zhuǎn)膜液配制便捷,稀釋后無需調(diào)節(jié)pH值,pH約為7.5-7.7。該緩沖液最終可配成10升即用型1×緩沖液(根據(jù)需求補加甲醇)。
● 保存和運輸:
粉末裝常溫保存,常溫運輸,兩年有效;配成10×轉(zhuǎn)膜緩沖液后4℃貯存,一年有效;加入甲醇的即用型轉(zhuǎn)膜緩沖液4℃貯存,一個月有效。
● 配制方法:
將10×轉(zhuǎn)膜緩沖液粉末全部溶解于1升超純水中,徹底溶解,即配成10×轉(zhuǎn)膜緩沖液。
根據(jù)下表配制成1×即用型轉(zhuǎn)膜緩沖液
|
1×即用型轉(zhuǎn)膜緩沖液
|
|
500 ml
|
1 L
|
2 L
|
10×轉(zhuǎn)膜緩沖液
|
50 ml
|
100 ml
|
200 ml
|
無水甲醇
|
甲醇終濃度0-20%
|
超純水
|
定容至 500 ml
|
定容至 1升
|
定容至 2升
|
|
不要調(diào)節(jié)pH
|
注:轉(zhuǎn)膜緩沖液中加入甲醇對蛋白有固定作用,轉(zhuǎn)膜分子量較大的蛋白少加或不加甲醇,轉(zhuǎn)膜分子量較小的蛋白要加至多20%的甲醇。非變性蛋白的轉(zhuǎn)膜可以不加甲醇。
● 使用方法:
1. BN電泳介紹:
Blue Native PAGE(BN-PAGE)是一種從生物樣品(質(zhì)膜,胞漿等)中分離分子量10 kD-10 M kD 范圍的蛋白質(zhì)復(fù)合物的電泳技術(shù)。其原理是用溫和去污劑(如 DDM,digitonin)將蛋白復(fù)合體從細胞膜中以近似天然的狀態(tài)分離出來,Blue Native PAGE (BN-PAGE)是用考馬斯亮藍 G-250 代替 SDS與蛋白結(jié)合而使其帶負電荷,根據(jù)蛋白分子量不同在 PAGE膠中得到分離。BN-PAGE由于考馬斯亮藍G-250存在,使蛋白都覆蓋上負電荷,可以分離堿性蛋白(pI>7)。BN電泳可以選擇Blue/Clear 非變性凝膠電泳試劑盒(U型板3-12%預(yù)制膠,通用型)(貨號:RTD6139-0312或RTD6139-0416)
2. 電泳后凝膠預(yù)處理(可選步驟):
凝膠浸泡于適量1×即用型BN轉(zhuǎn)膜緩沖液(加終濃度0.1% SDS)中,搖床慢搖10分鐘。
注:凝膠浸泡在含SDS緩沖液中,能讓蛋白帶上更多的負電荷,有利于蛋白的轉(zhuǎn)膜。
3. 轉(zhuǎn)膜:
3.1轉(zhuǎn)膜方法:BN電泳后的轉(zhuǎn)膜建議用濕轉(zhuǎn)法。
3.2膜的選擇:BN電泳轉(zhuǎn)膜必須使用PVDF膜,不能用NC膜(NC膜會與考馬斯亮藍G-250不可逆結(jié)合,很難清除干凈)。根據(jù)蛋白大小選擇膜的孔徑。一般說來,大于20 kD蛋白選擇0.45 μm孔徑,低于20 kD選擇0.22 μm孔徑。PVDF膜使用前要用無水甲醇潤濕活化。
3.3 三明治結(jié)構(gòu):轉(zhuǎn)膜三明治結(jié)構(gòu)與傳統(tǒng)轉(zhuǎn)膜相同,即根據(jù)“黑膠白膜”制作三明治,即膜置于轉(zhuǎn)膜夾芯正極一側(cè),凝膠置于轉(zhuǎn)膜夾芯負極一側(cè),這樣凝膠上帶負電荷的蛋白才能轉(zhuǎn)移到膜上。
蛋白轉(zhuǎn)膜三明治制作:
負極(電轉(zhuǎn)夾黑色面)-海綿墊-1層1 mm厚度濾紙-凝膠-膜-1層1 mm厚度濾紙-海綿墊-正
極(電轉(zhuǎn)夾白色面)
3.4 轉(zhuǎn)膜條件:
由于在非變性條件下,不同蛋白的空間結(jié)構(gòu),聚合狀態(tài),電荷數(shù)量都有不同,以下轉(zhuǎn)膜條件僅供參考,客戶針對自己的目的蛋白,最好經(jīng)過1-2次預(yù)實驗后,確定最佳的轉(zhuǎn)膜條件。
蛋白大小
|
穩(wěn)流
|
建議時間
|
降溫措施
|
低于70kD
|
150 mA
|
1 小時
|
不需要
|
70-300 kD
|
200 mA
|
1.5-2 小時
|
需要
|
高于300 kD
|
200 mA
|
2.5-3.5 小時
|
需要
|
4. 洗膜:
PVDF膜用無水甲醇清洗10分鐘,徹底去除藍色G250。
5. 進行后續(xù)WB操作:封閉-一抗-二抗-檢測。